感覺態細胞在基因工程實驗中，經常要使用各種感受態細胞進行DNA的轉化操作。轉化指同源、異源的“裸露”的DNA分子被感受態細胞攝取并得到表達的基因水平轉移過程。感受態細胞的制備是分子生物學研究中的一個重要環節，其制備質量的好壞直接影響到后續實驗工作的進行。
感覺態細胞的熱激與轉化：
所謂轉化，即重組DNA分子體外構建完成后，導入感受態細胞，使之無性繁殖并高效表達外源基因或直接改變其遺傳性狀的過程。轉化中常用的DNA類型是質粒。
冰上融化后，取50ul感受態，加入目的DNA（一般是質粒），輕輕混勻。然后將細胞和質粒的混合物在冰上放置30分鐘。
42℃水浴中熱激45秒（不同的感受態菌株熱激時間不一樣，即使同一感受態不同的有的熱激時間也不相同，所以要嚴格按照說明書上的熱激時間！）
然后快速將管轉移到冰浴中2分鐘，該過程不要搖動離心管。然后向每個離心管中加入無菌的SOC或LB培養基，混勻后置于37℃，200rpm培養1小時，使細菌復蘇。
根據實驗要求（質粒，重組連接產物轉化），吸取不同體積已轉化的感受態細胞加到含相應抗生素的LB瓊脂培養基上，將細胞均勻涂開。將平板置于37℃至液體被吸收，倒置平板，37℃過夜培養。第二天，被質粒轉化過的細菌將會形成菌落。接下來，計數菌落數目來計算轉化效率，它是成功轉化菌落的數目除以總DNA的量得到的數值。
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